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切向流過濾技術簡介和應用介紹

內容大綱
膜過濾技術與切向流過濾
切向流過濾與傳統(tǒng)過濾方式之比較
切向流過濾濾膜形式
使用切向流過濾進行滲濾
切向流過濾應用領域
附錄:如何選擇切向流過濾濾膜

膜過濾技術與切向流過濾

 

膜過濾技術(membrane filtration)為廣泛使用的分離與純化技術,其作用機制是利用濾膜孔徑來篩選不同大小的分子及粒子。 膜過濾技術可根據過濾分子的大小,從小分子至大分子依序分為逆滲透(reverse osmosis, RO)、納米過濾(nanofiltration,NF)、超過濾(ultrafiltration,UF)、微過濾(microfiltration,MF)、澄清(clarification)。
微過濾(MF)與超過濾(UF)是運用*廣泛的膜過濾技術。 微過濾技術可過濾 0.1 ~ 10 um 的分子,如細菌等; 而超過濾技術則可用以分離 0.001 ~ 0.1 um 的生物分子,如蛋白質、病毒等。 其中,超過濾技術屬于較為溫和的處理方式,不易造成生物分子變性(denature)或失活(inactive),使得超過濾技術在生物分子應用上更具有優(yōu)勢。 而切向流過濾 (Tangential Flow Filtration, TFF) 即為超過濾中*常使用的技術,常應用于如分子生物學 、生物化學 、免疫學、蛋白質化學、微生物學等生物學領域。

切向流01.jpg

 


 

切向流過濾與傳統(tǒng)過濾方式之比較

 

一般傳統(tǒng)過濾法為直流式過濾 (Direct Flow Filtration, DFF; dead-end filtration),其樣品流垂直流動于膜表面,使小分子得以通過濾膜。 然而,大分子卻容易堆積于膜表面,形成濾餅層,而隨著過濾時間增加,濾餅層厚度會隨之變厚,使得濾膜堵塞,導致流速、分子分離效果下降,并且縮短濾膜使用壽命。
而于切向流過濾中,樣品流則是水平流動于膜表面,并以垂直于膜表面的方向進行過濾(即以正切角度進行過濾),使得樣品可以隨著流速循環(huán)、同時也對膜表面進行沖洗,避免大分子堆積在膜表面并防止?jié)舛葮O化降低流速,從而維持穩(wěn)定的流速,可有效地進行過濾及延長濾膜壽命。
功能方面,切向流過濾可同時進行濃縮(concentration)及滲濾(diafiltration),且試驗等級與量產等級的切向流設備共享參數,可輕松放大生產規(guī)模。
綜合上述多項優(yōu)勢,在生科、生技及生醫(yī)相關領域場所如醫(yī)院、藥廠等,已逐漸以切向流過濾取代傳統(tǒng)過濾法。

切向流02.jpg

 

切向流過濾濾膜形式

 

TFF 適用多種型式的濾膜,如平板過濾膜 (flat plate),又稱為卡匣 (cassette; capsule); 中空纖維膜 (hollow fiber; cartridge) 及螺旋狀過濾膜 (spiral wound)。 目前實驗室多以使用平板過濾膜及中空纖維膜為主。

切向流03.jpg

切向流04.jpg

切向流05.jpg

 

平板過濾膜

(flat plate)

中空纖維膜

(hollow fiber)

螺旋狀過濾膜

(spiral wound)

每單位過濾體積的表面積

次高

可直接放大規(guī)模

不可

可減少濃度極化現象

不可

適用樣品量

*多

適用樣品

? 一般微小生物分子樣品

? 含高污染物或/與高黏度的污水

? 對剪切力敏感 (shear-sensitive) 物質,如部分酵素、蛋白質等
? 具高濃度懸浮固形物(TSS) 的污水

需大面積過濾樣品,如食品、飲料等

清潔方式

? 利用適當溶液循環(huán)沖洗
抽吸大氣,排凈溶液

? 利用適當溶液循環(huán)沖洗
? 抽吸大氣,排凈溶液
? 利用適當溶液逆向沖洗 (backwashing)

? 利用適當溶液循環(huán)沖洗
? 定位洗凈 (clean-in-place, CIP)

 


 

使用切向流過濾系統(tǒng)進行滲濾

 

滲濾 (diafiltration)的定義為,將樣品中可以通過濾膜的小分子,如:鹽、小分子蛋白質、溶劑等,在樣品流流經濾膜時,透過濾膜,自樣品流中分離,并將大分子持續(xù)循環(huán)進行濃縮的過程。 滲濾常見應用包含透析、去鹽、緩沖液置換等,而其過程又分為不連續(xù)滲濾與連續(xù)滲濾兩種。

不連續(xù)滲濾(discontinuous diafiltration)是以手動方式將水/新鮮緩沖液/稀釋液以一定體積加入樣品中,待濃縮至一定體積后再次加入緩沖液后濃縮,不斷重復上述過程至滲濾完成。
不連續(xù)滲濾時,樣品濃度持續(xù)變化、易變性,且滲透量(流量)會隨著樣品濃度的增加而降低。

連續(xù)滲濾(continuous diafiltration),又稱為定容滲濾 (constant volume diafiltration) ,其過程以「與產生濾液的相同速度」來添加水/新鮮緩沖液/稀釋液等,來過濾掉原本溶液中的鹽類或其它小分子,因此進行連續(xù)滲濾的過程中,系統(tǒng)中總溶液體積不會改變, 因此生物分子不容易被破壞結構、產生變性。 此外,經實驗發(fā)現,相較于不連續(xù)滲濾,連續(xù)滲濾添加較少的緩沖液就可以達到99%的分離效果。

以去鹽為例,過濾過程中是透過添加滲濾體積(diafiltration volume, DV) 降低鹽濃度。 進行連續(xù)滲濾時,直接以5個DV,即可移除達約99%的鹽分子; 而在不連續(xù)滲濾時,在以手動方式每次添加1個 DV的狀況下,則必須在添加7個 DV 后,才可移除99%的鹽分子。
綜觀以上,連續(xù)滲濾被認為相較于不連續(xù)滲濾而言,是相對「溫和」的生物分子處理過程,在生科領域應用中更具有優(yōu)勢。

連續(xù)滲濾

 

不連續(xù)滲濾
(Discontinuous Diafiltration)

連續(xù)滲濾
(Continuous Diafiltration)

進樣方法

手動

自動化

需要添加溶液體積

較多

較少

樣品回收率

較低

較高

維持生物分子結構

優(yōu)

同一系統(tǒng)中進行濃縮

 


 

切向流過濾應用領域

 

  • 濃縮、去鹽:如蛋白質、勝肽、核酸 (DNA, RNA) 等
  • 分離、純化:如酵素、抗體、重組蛋白、病毒、疫苗等
  • 緩沖液置換:如去除溶劑、透析等
  • 澄清; 如細胞裂解物 、組織均質物 等
  • 去熱原 :如水、緩沖液、培養(yǎng)液等 – 須以管柱層析分析 (column chromatography) 的樣品前處理
  • 細胞收集
  • 濃縮病毒:濃縮溶瘤麻疹病毒 (oncolytic measles virus) 以*末期癌癥
  • 臨床醫(yī)療:血液透析 (hemodialysis)、血紅素 (hemoglobin) 純化

 


 

附錄:如何選擇切向流過濾濾膜

 

切向流過濾系統(tǒng)中所使用的濾膜相較于直流過濾所使用的濾膜構造十分不同,在挑選時,建議可考慮以下幾個重點:

欲保留或移除目標分子

厘清實驗的目的是保留或是移除目標分子:濃縮為保留目標分子,滲濾、去鹽、溶液置換為移除目標分子。

 

目標分子的分子量

依照目標分子的大小,評估適用的濾膜孔徑大小,一般以截留分子量(MWCO, NMWL)或分子直徑表示。 濾膜的選擇,通常依廠家不同會選擇目標分子分子量1/3 ~ 1/6的 MWCO,即低于目標分子量的3~6倍,并留意欲分離的分子之間,大小至少應相差10倍以上,以確?;旌衔镉行Х蛛x; 若以分子直徑選擇濾膜,則選用濾膜孔徑 (um)小于目標分子直徑即可。
然而,分子量及分子直徑并無直接關系,無法進行換算,因此在選用濾膜時,應多加留意其標示。

 

回收率的要求高/低

回收率的需求與MWCO的選擇有關:
回收率要求不高(低):可選用MWCO低于目標分子3倍的濾膜,其孔徑大、處理速度快。
回收率要求高:可選用MWCO低于目標分子6倍的濾膜,其孔徑小,但處理速度較慢。
此外,濾材的選擇也會影響回收率,一般分為 PES (polyethersulfone) 及纖維素材質,PES具有較高的樣品結合率,導致回收率較低; 纖維素跟樣品結合率低,因此具有高回收率,針對較為珍貴的樣品,即可選用纖維素制成的濾膜。

 

步驟

項目

1. 目的

(1) 濃縮→欲保留分子

(2) 滲濾、去鹽、溶液置換→欲移除分子
– 為確保有效分離,欲分離的分子大小至少應相差10倍以上

2. 濾膜/濾材選擇

(1) 目標分子的分子量 (MW)
– 截留分子量 (MWCO) 定義為被膜保留90~95%的球型分子分子量
– 通則:MWCO 應低于欲保留目標分子分子量的 3倍~6倍

(2) 回收率 (Recovery)
– 較低的 MWCO (6X):目標分子回收率較佳
– 較高的 MWCO (3X):處理速度較快

濾材 –
? Cellulose – 低樣品結合率 (高回收率),NaOH 耐性普通
? PES – 較高的樣品結合率 (較低回收率),耐 pH 范圍廣

 


 

引用數據 :

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